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NMN · NMNAT · NAD+

NMN: química del nicotinamida mononucleótido

NMN o nicotinamida mononucleótido: fórmula C11H15N2O8P, isómeros α y β, conversión por NMNAT, diferencias frente a NR y NAD+, y análisis por LC-MS.

Investigación·11 min·Actualizado 2026-07-18

Evidencia publicada

Estudios y modelos experimentales de NMN

Fuentes y variables experimentales de NMN
CompuestoNMN
Área de estudioQué es NMN y por qué es un nucleótido, no un péptido
Variable o mecanismoNMN significa nicotinamida mononucleótido. Es un ribonucleótido formado por nicotinamida, ribosa y fosfato, con fórmula C11H15N2O8P y masa molecular de 334.22 g/mol. No contiene enlaces peptídicos ni una secuencia de aminoácidos.
Fuentes3 publicaciones o registros; niveles: Artículos y registros científicos citados.
Referencia principalJournal of Biological Chemistry 279(49):50754-50763, 2004: The NAD biosynthesis pathway mediated by nicotinamide phosphoribosyltransferase regulates Sir2 activity in mammalian cells.

La referencia principal para NMN es «The NAD biosynthesis pathway mediated by nicotinamide phosphoribosyltransferase regulates Sir2 activity in mammalian cells» (Journal of Biological Chemistry 279(49):50754-50763, 2004). NMN significa nicotinamida mononucleótido. Es un ribonucleótido formado por nicotinamida, ribosa y fosfato, con fórmula C11H15N2O8P y masa molecular de 334.22 g/mol. No contiene enlaces peptídicos ni una secuencia de aminoácidos. La interpretación permanece limitada al diseño, la variable y las condiciones descritas por la publicación.

Identidad

Qué es NMN y por qué es un nucleótido, no un péptido

NMN significa nicotinamida mononucleótido. Es un ribonucleótido formado por nicotinamida, ribosa y fosfato, con fórmula C11H15N2O8P y masa molecular de 334.22 g/mol. No contiene enlaces peptídicos ni una secuencia de aminoácidos.

La abreviatura suele referirse a β-NMN, pero existen anómeros α y β. La configuración del enlace entre nicotinamida y ribosa es parte de la identidad. Una ficha rigurosa debe declarar el anómero, no limitarse a indicar NMN como nombre genérico.

Biosíntesis

NAMPT produce NMN y NMNAT lo convierte en NAD+

En la ruta de salvamento de nicotinamida, NAMPT transfiere fosforribosilo para formar NMN. Después, NMNAT utiliza ATP para adenilar NMN y producir NAD+. El mononucleótido es un intermediario inmediato; el dinucleótido final participa como cofactor y sustrato en numerosas reacciones.

Esa secuencia permite diseñar ensayos separados para disponibilidad de precursor, actividad enzimática y concentración de NAD+. Añadir NMN y detectar una señal celular no demuestra por sí solo que el cambio haya ocurrido mediante NMNAT; medir metabolitos de la ruta aporta el enlace faltante.

Isomería

β-NMN y α-NMN: misma fórmula, configuración diferente

Los anómeros comparten fórmula y masa nominal, por lo que una medición de masa intacta no basta para distinguirlos. La geometría del centro anomérico modifica reconocimiento enzimático y comportamiento cromatográfico. β-NMN es la referencia biológica empleada habitualmente en la ruta de NAD+.

La separación puede requerir condiciones cromatográficas capaces de resolver anómeros y estándares autenticados. NMR añade información estructural cuando la asignación configuracional es crítica. Reportar solo 334.22 g/mol deja sin resolver qué isómero contiene la muestra.

Comparación

NMN vs NR y NAD+: precursor, nucleósido y cofactor

NR, nicotinamida ribósido, carece del fosfato de NMN y puede convertirse en NMN mediante nicotinamida ribósido quinasas. NMN ya contiene ese fosfato. NAD+ añade un segundo nucleótido de adenosina y constituye el cofactor formado por NMNAT.

Las tres moléculas tienen masas, cargas y transporte diferentes. Un método LC-MS debe separarlas y utilizar transiciones específicas. Medir NAD+ después de añadir NMN no equivale a medir NMN residual, y una variación en la razón NAD+/NADH requiere interpretar también el estado redox.

Ensayos

Cómo medir NMN, NAD+ y flujo metabólico sin mezclarlos

LC-MS dirigida puede cuantificar NMN, NAD+, nicotinamida y otros intermediarios en una misma extracción si se controlan estabilidad y efectos de matriz. Isótopos internos mejoran corrección de recuperación. Los ensayos enzimáticos de NAD total son útiles, pero no sustituyen una medición específica de NMN.

La extracción rápida y fría limita degradación y conversión posteriores al muestreo. También conviene distinguir abundancia de metabolito de flujo: una concentración estable puede coexistir con síntesis y consumo elevados. Trazadores isotópicos permiten seguir el origen de los átomos a través de la ruta.

Control químico

Pureza, humedad y estabilidad del nicotinamida mononucleótido

NMN es polar e iónico; humedad, pH y temperatura afectan su manejo y estabilidad. La caracterización debe cubrir identidad, anómero, contenido, agua y especies de degradación. HPLC o cromatografía iónica pueden evaluar pureza, mientras LC-MS confirma masa y perfil de productos relacionados.

Un porcentaje de pureza sin base de cálculo puede referirse a área cromatográfica o a contenido sobre masa seca. Esas cifras no son intercambiables. Para preparar soluciones reproducibles se necesita saber si el valor corrige agua y qué forma química se utilizó como referencia.

Disponible en ViuPeptides

NAD+ y 5-Amino-1MQ desde rutas metabólicas distintas

NAD+ permite trabajar con el dinucleótido formado después de la reacción de NMNAT. 5-Amino-1MQ aborda NNMT y el metabolismo de nicotinamida desde otra enzima. Compararlos exige registrar precursor, cofactor, isómero y lectura metabólica por separado.

NAD+ (cofactor)5-Amino-1MQ (metabolismo de NAD+)

Referencias

Literatura citada sobre NMN

  1. Revollo JR, Grimm AA, Imai S. The NAD biosynthesis pathway mediated by nicotinamide phosphoribosyltransferase regulates Sir2 activity in mammalian cells. Journal of Biological Chemistry 279(49):50754-50763 2004.doi:10.1074/jbc.M408388200
  2. Bieganowski P, Brenner C. Discoveries of nicotinamide riboside as a nutrient and conserved NRK genes establish a Preiss-Handler independent route to NAD+. Cell 117(4):495-502 2004.doi:10.1016/j.cell.2004.03.024
  3. Nicotinamide mononucleotide. PubChem Compound Summary 2026.Ver fuente

Preguntas

Preguntas frecuentes sobre NMN

¿NMN es un péptido?

No. NMN es un nucleótido compuesto por nicotinamida, ribosa y fosfato. Su fórmula es C11H15N2O8P y su masa molecular 334.22 g/mol. No tiene secuencia de aminoácidos. Se estudia como intermediario de la biosíntesis de NAD+ y como sustrato de NMNAT.

¿Qué diferencia hay entre NMN y NAD+?

NMN es un mononucleótido precursor. NMNAT lo combina con una unidad de adenilato proveniente de ATP para formar NAD+, un dinucleótido que funciona como cofactor y sustrato enzimático. Son moléculas diferentes y deben cuantificarse con señales específicas, aunque pertenezcan a la misma ruta.

¿β-NMN y α-NMN tienen la misma masa?

Sí, comparten fórmula y masa nominal, pero difieren en la configuración anomérica del enlace a la ribosa. Por eso MS de masa intacta no los distingue por sí sola. Se requieren separación cromatográfica, un estándar adecuado o información estructural adicional para confirmar cuál anómero está presente.

¿Cómo se convierte NMN en NAD+?

La enzima nicotinamida mononucleótido adenylyltransferasa, NMNAT, transfiere una unidad de AMP desde ATP hacia NMN y forma NAD+. El ensayo puede seguir consumo de NMN, aparición de NAD+ o coproductos. Medir ambos metabolitos ofrece más información que una lectura final aislada.

¿Qué método cuantifica NMN en una muestra biológica?

LC-MS dirigida puede separar y cuantificar NMN junto con NAD+, nicotinamida y otros metabolitos si la extracción limita degradación. Los estándares internos isotópicos corrigen pérdidas y matriz. Un ensayo enzimático de NAD total no informa automáticamente cuánto NMN permaneció en la muestra.

¿ViuPeptides vende NMN?

NMN no está en el catálogo actual. ViuPeptides ofrece NAD+, el dinucleótido formado después de la reacción de NMNAT, y 5-Amino-1MQ, relacionado con inhibición de NNMT. Son herramientas químicas diferentes y no deben presentarse como equivalentes del precursor β-NMN en un diseño experimental.

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